Parasites eucaryotes intracellulaires: immunité et chimiorésistance

Responsable : N. Blanchard

Objectifs Scientifiques


N. Blanchard

Immunité lymphocytaire T au cours de la toxoplasmose et du paludisme


A. Berry

Physiopathologie et chimiorésistance du paludisme

 

 

Nos recherches portent sur le développement de l’immunité et sa modulation au cours d’infections par deux parasites apicomplexes: Toxoplasma gondii et Plasmodium. Ces parasites causent respectivement la toxoplasmose et le paludisme. Ce sont des micro-organismes eucaryotes unicellulaires qui résident dans une vacuole dite parasitophore, à l’intérieur des cellules infectées. Nous travaillons également sur l’épidémiologie et les mécanismes de résistance aux médicaments utilisés contre le paludisme.

Le paludisme touche 200 millions de personnes dans le monde et tue près d’un demi-million de personnes chaque année. Les enfants d’Afrique sub-saharienne paient le plus lourd tribut car ils sont plus susceptibles de développer des complications mortelles telles que le neuropaludisme.

La toxoplasmose représente un risque gravissime chez le fœtus si le parasite est primo-contracté par la mère pendant la grossesse. De plus, l’infection par T. gondii peut entraîner une choriorétinite ou une encéphalite chez les personnes immunodéprimées.  Enfin, même chez les individus immunocompétents, le parasite persiste et pourrait être responsable de troubles comportementaux.

La disponibilité d’outils génétique et la relative simplicité du cycle asexué de T. gondii en font un modèle précieux pour mieux comprendre les maladies dues aux parasites apicomplexes.

Nos Projets


AXE 1: Présentation des antigènes aux lymphocytes T CD8 au cours de la toxoplasmose

Les lymphocytes T CD8 jouent un rôle majeur dans l’immunité protectrice contre T. gondii.  Dans la mesure où T. gondii réside dans une vacuole séparée du cytosol de la cellule-hôte, les antigènes issus de ces parasites doivent passer au travers de la membrane vacuolaire pour accéder à la voie de présentation par le CMH de classe I. Ces mécanismes fascinants restent encore mal compris.  Les modalités de la reconnaissance du parasite par les lymphocytes T CD8 dans le cerveau sont par ailleurs totalement méconnus.

 

L’infection par T. gondii                                                         Neurones hippocampaux de souris (marquage MAP2 en gris) hébergeant des kystes (marquage jaune) de T. gondii (rouge)

En utilisant des parasites T. gondii génétiquement modifiés et des outils de mesure de la présentation antigénique (par exemple des hybridomes T ‘rapporteurs’), nous avons identifié les paramètres qui contrôlent l’apprêtement des antigènes de T. gondii dans les cellules infectées. Nous avons montré que la localisation de l’épitope à l’extrémité C-terminale de l’antigène-source (dans le cas de la protéine immunogénique GRA6) est nécessaire pour l’immunodominance des réponses T CD8 et pour la protection (Feliu et al, PLoS Path 2013). Bien que le recrutement du réticulum endoplasmique (RE) via Sec22b soit impliqué dans la présentation des antigènes luminaux par le CMH I (Cebrian et al, Cell 2011), il n’est pas requis pour la présentation de l’antigène GRA6. Pour GRA6, c’est la topologie de son insertion dans la membrane vacuolaire qui compte (Buaillon *, Guerrero * et al, Eur J Immunol 2017).

L’interface entre T. gondii et son hôte comprend la membrane limitante de la vacuole mais aussi un réseau intra-vacuolaire de tubules membranaires (IVN ou iTVN) dont les fonctions restent assez mystérieuses (Santi-Rocca et Blanchard, Curr Op Microbiology 2017). En utilisant différents mutants de T. gondii, nous avons montré que l’association des antigènes à l’IVN limite leur présentation et réduit les réponses CD8 spécifiques. Nos données indiquent que les déformations membranaires telles que l’IVN jouent un rôle dans la modulation immunitaire (Lopez et al, Cell Reports 2015).

Récemment, nous avons étudié les mécanismes à l’origine de la détection du parasite par les lymphocytes T CD8 infiltrant le cerveau.  Nous avons montré que les neurones sont capables de présenter des antigènes du parasite aux lymphocytes CD8 et que ce mécanisme est indispensable pour le contrôle du parasite dans le cerveau (Salvioni et al, Cell Reports 2019)

Sachant qu’aucun traitement n’existe contre les formes persistantes intra-cérébrales de Toxoplasma gondii (kystes), les lymphocytes T CD8 constituent des cellules d’intérêt pour tenter d’éliminer le parasite.

Sur cette base, nos projets consistent à :

  1. Déterminer les mécanismes d’échappement des kystes vis-à-vis des lymphocytes T CD8
  2. Analyser comment les interactions neurones/lymphocytes T CD8 contribuent aux modifications comportementales induites par gondii (collaboration E. Suberbielle, équipe Dunia)
  3. Comprendre la génération des lymphocytes T mémoire CD8 intra-cérébraux dans le contexte de la toxoplasmose latente (collaboration F. Masson, équipe Liblau/Saoudi)

 

 

 


‘Mosaïque’ de vacuoles contenant le parasite Toxoplasma gondii dans des fibroblastes humains

 

 


 

 

Macrophage de souris envahi par 2 parasites T. gondii

 

 

 

PI: N. Blanchard
AXE 2: Contrôle de l'immunité protectrice contre le paludisme au stade sanguin par les interactions entre cellules dendritiques et lymphocytes T CD4

Le neuropaludisme est une complication mortelle du paludisme, caractérisée par une perte d’intégrité vasculaire des capillaires du cerveau, entrainant des micro-hémorragies et un œdème cérébral.

Le neuropaludisme est associé à la séquestration de globules rouges parasités et de leucocytes dans les micro-capillaires cérébraux. Un modèle expérimental de neuropaludisme chez la souris a révélé que les lymphocytes T CD8 sont des effecteurs-clé entraînant des lésions endothéliales et que les cellules CD4 polarisées en T auxiliaires ‘Th1’ sont à la base du développement de la maladie. Il est établi par ailleurs que différentes sous-populations de Th CD4 permettent l’immunité humorale anti-paludique et/ou contrôlent l’immunopathologie. Pourtant, les antigènes du parasite présentés par le CMH de classe II et le rôle des cellules dendritiques (DC) dans la polarisation des Th CD4 restent méconnus.

En utilisant un modèle murin de neuropaludisme induit par Plasmodium berghei ANKA (Pb ANKA), nous avons identifié le premier immunopeptidome CMH II au cours du paludisme (Draheim et al., EMBO Mol Med 2017). Nous avons validé les peptides in vivo dans des souris infectées, ainsi que dans des souris vaccinées avec un parasite atténué. Nous avons trouvé que les DC XCR1+ CD8a+ (cDC1) surpassent les autres cellules pour la présentation d’antigènes dérivés de Plasmodium par le CMH II. En éliminant sélectivement les cDC1, nous avons montré que ces cellules favorisent la différenciation en Th1 pathogéniques pour le neuropaludisme, et qu’elles inhibent le développement de cellules T CD4 plus régulatrices, productrices d’IL-10.

Nous cherchons maintenant à comprendre l’impact de diverses sous-populations de DC sur la fonctionnalité des CD4 Th au cours du paludisme. Nous souhaitons également cartographier l’immunopeptidome de P. falciparum chez l’homme.

En parallèle, nous étudions les mécanismes à l’origine des différences de physiopathologie observées entre différentes espèces et lignées de Plasmodium, qui sont plus ou moins protectrices dans des modèles d’immunopathologie causée par les lymphocytes T (neuropaludisme, sclérose en plaques).

 

Globules rouges de souris parasités par le parasite Plasmodium berghei.

 

PI: N. Blanchard
AXE 3: Surveillance épidémiologique de la chimiorésistance du parasite du paludisme et analyse des mécanismes moléculaires de la résistance

Une surveillance régulière des niveaux de résistance de P. falciparum aux anti-paludéens est essentielle pour adapter les thérapies et améliorer la lutte contre le paludisme.

En collaboration avec l’Institut pour la Recherche et le Développement (IRD), nous évaluons l’impact des traitements anti-paludiques sur l’émergence et la propagation de parasites résistants au Cameroun (Ménard et al, Malar J 2012). Les dérivés de l’artémisinine (ART) sont la dernière classe d’anti-paludiques encore efficace, mais l’émergence de souches de P. falciparum résistantes constitute un problème de santé publique alarmant. En collaboration avec F. Benoit-Vical (LCC CNRS, Toulouse), nous avons démontré que les parasites F32-ART, une souche hautement résistante à l’ART in vitro, survivent à l’effet toxique de ART par arrêt de croissance temporaire, comme cela a été récemment rapporté dans les isolats de paludisme provenant de patients en Asie (Witkowski et al., AAC 2010 et AAC 2013). En séquençant le génome entier de F32-ART et sa lignée parentale en collaboration avec les Instituts Pasteur de Paris et du Cambodge, nous avons trouvé des mutations qui étaient également présentes dans les isolats cliniques de paludisme résistants aux ART en Asie du Sud-Est. Ces résultats ont permis l’identification du premier gène (marqueur moléculaire) fortement associé à la résistance aux ARV (Ariey et al, Nature 2014).

Sur la base de ce travail, nous menons 2 objectifs:

1- Surveiller l’émergence et la propagation de la chimiorésistance de P. falciparum en Afrique et en Asie du Sud-Est
2- Caractériser les mécanismes sous-jacents à la quiescence de P. falciparum et identifier des stratégies thérapeutiques pour contrer la quiescence

 


Un parasite Plasmodium falciparum en quiescence dans un érythrocyte humain après traitement à l’artémisinine

 

 

 

 

OCEAC, Organisation de coordination et de coopération pour la lutte contre les grandes endémies en Afrique centrale (Yaoundé, Cameroun).

 

 

 

Détection de paludisme chez des enfants du district de Mfou (Cameroun)

PI: A. Berry

Autres informations


Impact sociétal

Notre travail en zones endémiques (Afrique, Asie du Sud-Est) fournira des informations précieuses sur la propagation de Plasmodium résistants aux dérivés de l’artémisinine ainsi qu’à d’autres médicaments encore efficaces pour le traitement du paludisme.

Ces données devraient nous permettre de développer de nouvelles stratégies de contrôle afin de circonscrire ces clones résistants. Une meilleure compréhension de la biologie des parasites résistants est également essentielle pour concevoir de nouvelles stratégies pharmacologiques.

Nos activités plus fondamentales sur l’immunité contre Toxoplasma gondii et Plasmodium pourraient mettre en lumière de nouvelles voies et/ou molécules par lesquelles les parasites intracellulaires manipulent la présentation de leurs propres antigènes et modulent les réponses immunitaires.

Nos études contribuent à l’identification de nouvelles cibles vaccinales.  Elles pourraient déboucher sur l’identification d’approches permettant d’exploiter les lymphocytes T CD8 pour éliminer les kystes de T. gondii, contre lesquels il n’existe à ce jour aucun traitement.

Publications

2019

Salvioni, A; Belloy, M; Lebourg, A; Bassot, E; Cantaloube-Ferrieu, V; Vasseur, V; Blanie, S; Liblau, R S; Suberbielle, E; Robey, E A; Blanchard, N

Robust Control of a Brain-Persisting Parasite through MHC I Presentation by Infected Neurons Article de journal

Cell Rep, 27 (11), p. 3254-3268 e8, 2019, (Jun 11;27(11):3254-3268.e8. doi: 10.1016/j.celrep.2019.05.051.).

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Charpentier, E; Benichou, E; Pages, A; Chauvin, P; Fillaux, J; Valentin, A; Guegan, H; Guemas, E; Salabert, A S; Armengol, C; Menard, S; Cassaing, S; Berry, A; Iriart, X

Performance evaluation of different strategies based on microscopy techniques, rapid diagnostic test and molecular loop-mediated isothermal amplification assay for the diagnosis of imported malaria Article de journal

Clin Microbiol Infect, 2019, (May 31. pii: S1198-743X(19)30225-3. doi: 10.1016/j.cmi.2019.05.010.).

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Poncet, A F; Blanchard, N; Marion, S

Toxoplasma and Dendritic Cells: An Intimate Relationship That Deserves Further Scrutiny Article de journal

Trends Parasitol, 2019, (Sep 3. pii: S1471-4922(19)30210-7. doi: 10.1016/j.pt.2019.08.001.).

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Guegan, H; Fillaux, J; Charpentier, E; Robert-Gangneux, F; Chauvin, P; Guemas, E; Boissier, J; Valentin, A; Cassaing, S; Gangneux, J P; Berry, A; Iriart, X

Real-time PCR for diagnosis of imported schistosomiasis Article de journal

PLoS Negl Trop Dis, 13 (9), p. e0007711, 2019.

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2018

Niare, K; Paloque, L; Menard, S; Tor, P; Ramadani, A P; Augereau, J M; Dara, A; Berry, A; Benoit-Vical, F; Doumbo, O K

Multiple Phenotypic and Genotypic Artemisinin Sensitivity Evaluation of Malian Plasmodium falciparum Isolates Article de journal

Am J Trop Med Hyg, 2018, (Feb 12. doi: 10.4269/ajtmh.17-0798.).

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2017

Bonnart, C; Feuillet, G; Vasseur, V; Cenac, N; Vergnolle, N; Blanchard, N

Protease-Activated Receptor 2 contributes to Toxoplasma gondii-mediated gut inflammation Article de journal

Parasite Immunol, 2017, (Sep 7. doi: 10.1111/pim.12489.).

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Buaillon, C; Guerrero, N A; Cebrian, I; Blanie, S; Lopez, J; Bassot, E; Vasseur, V; Santi-Rocca, J; Blanchard, N

MHC I presentation of Toxoplasma gondii immunodominant antigen does not require Sec22b and is regulated by antigen orientation at the vacuole membrane Article de journal

Eur J Immunol, 47 (7), p. 1160-1170, 2017, (Jul;47(7):1160-1170. doi: 10.1002/eji.201646859. Epub 2017 Jun 8.).

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Draheim, M; Wlodarczyk, M F; Crozat, K; Saliou, J M; Alayi, T D; Tomavo, S; Hassan, A; Salvioni, A; Demarta-Gatsi, C; Sidney, J; Sette, A; Dalod, M; Berry, A; Silvie, O; Blanchard, N

Profiling MHC II immunopeptidome of blood-stage malaria reveals that cDC1 control the functionality of parasite-specific CD4 T cells Article de journal

EMBO Mol Med, 2017, (Sep 21. pii: e201708123. doi: 10.15252/emmm.201708123.).

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Keita Alassane, S; Nicolau-Travers, M L; Menard, S; Andreoletti, O; Cambus, J P; Gaudre, N; Wlodarczyk, M; Blanchard, N; Berry, A; Abbes, S; Colongo, D; Faye, B; Augereau, J M; Lacroux, C; Iriart, X; Benoit-Vical, F

Young Sprague Dawley rats infected by Plasmodium berghei: A relevant experimental model to study cerebral malaria Article de journal

PLoS One, 12 (7), p. e0181300, 2017, (Jul 24;12(7):e0181300. doi: 10.1371/journal.pone.0181300. eCollection 2017.).

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Lebrun, M; Blanchard, N

Editorial overview: Host-microbe interactions: parasites Article de journal

Curr Opin Microbiol, 40 , p. viii-xi, 2017, (Dec;40:viii-xi. doi: 10.1016/j.mib.2017.11.028.).

BibTeX

Santi-Rocca, J; Blanchard, N

Membrane trafficking and remodeling at the host-parasite interface Article de journal

Curr Opin Microbiol, 40 , p. 145-151, 2017, (Dec;40:145-151. doi: 10.1016/j.mib.2017.11.013. Epub 2017 Nov 22.).

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2016

Cebrian, I; Croce, C; Guerrero, N A; Blanchard, N; Mayorga, L S

Rab22a controls MHC-I intracellular trafficking and antigen cross-presentation by dendritic cells Article de journal

EMBO Rep, 2016, (Oct 10. pii: e201642358.).

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Chu, H H; Chan, S W; Gosling, J P; Blanchard, N; Tsitsiklis, A; Lythe, G; Shastri, N; Molina-Paris, C; Robey, E A

Continuous Effector CD8(+) T Cell Production in a Controlled Persistent Infection Is Sustained by a Proliferative Intermediate Population Article de journal

Immunity, 45 (1), p. 159-71, 2016, (Jul 19;45(1):159-71. doi: 10.1016/j.immuni.2016.06.013. Epub 2016 Jul 12.).

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Latour, C; Wlodarczyk, M F; Jung, G; Gineste, A; Blanchard, N; Ganz, T; Roth, M P; Coppin, H; Kautz, L

Erythroferrone contributes to hepcidin repression in a mouse model of malarial anemia Article de journal

Haematologica, 2016, (Sep 22. pii: haematol.2016.150227.).

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Menard, D; Khim, N; Beghain, J; Adegnika, A A; Shafiul-Alam, M; Amodu, O; Rahim-Awab, G; Barnadas, C; Berry, A; Boum, Y; Bustos, M D; Cao, J; Chen, J H; Collet, L; Cui, L; Thakur, G D; Dieye, A; Djalle, D; Dorkenoo, M A; Eboumbou-Moukoko, C E; Espino, F E; Fandeur, T; Ferreira-da-Cruz, M F; Fola, A A; Fuehrer, H P; Hassan, A M; Herrera, S; Hongvanthong, B; Houze, S; Ibrahim, M L; Jahirul-Karim, M; Jiang, L; Kano, S; Ali-Khan, W; Khanthavong, M; Kremsner, P G; Lacerda, M; Leang, R; Leelawong, M; Li, M; Lin, K; Mazarati, J B; Menard, S; Morlais, I; Muhindo-Mavoko, H; Musset, L; Na-Bangchang, K; Nambozi, M; Niare, K; Noedl, H; Ouedraogo, J B; Pillai, D R; Pradines, B; Quang-Phuc, B; Ramharter, M; Randrianarivelojosia, M; Sattabongkot, J; Sheikh-Omar, A; Silue, K D; Sirima, S B; Sutherland, C; Syafruddin, D; Tahar, R; Tang, L H; Toure, O A; Tshibangu-wa-Tshibangu, P; Vigan-Womas, I; Warsame, M; Wini, L; Zakeri, S; Kim, S; Eam, R; Berne, L; Khean, C; Chy, S; Ken, M; Loch, K; Canier, L; Duru, V; Legrand, E; Barale, J C; Stokes, B; Straimer, J; Witkowski, B; Fidock, D A; Rogier, C; Ringwald, P; Ariey, F; Mercereau-Puijalon, O

A Worldwide Map of Plasmodium falciparum K13-Propeller Polymorphisms Article de journal

N Engl J Med, 374 (25), p. 2453-64, 2016, (Jun 23;374(25):2453-64. doi: 10.1056/NEJMoa1513137.).

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Menard, S; Tchoufack, J N; Maffo, C N; Nsango, S E; Iriart, X; Abate, L; Tsapi, M T; Awono-Ambene, P H; Abega Mekongo, F A; Morlais, I; Berry, A

Insight into k13-propeller gene polymorphism and ex vivo DHA-response profiles from Cameroonian isolates Article de journal

Malar J, 15 (1), p. 572, 2016, (Nov 26;15(1):572.).

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Sanecka, A; Yoshida, N; Dougan, S K; Jackson, J; Shastri, N; Ploegh, H; Blanchard, N; Frickel, E M

Transnuclear CD8 T cells specific for the immunodominant epitope Gra6 lower acute-phase Toxoplasma gondii burden Article de journal

Immunology, 2016, (Jul 5. doi: 10.1111/imm.12643.).

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Tchioffo, M T; Abate, L; Boissiere, A; Nsango, S E; Gimonneau, G; Berry, A; Oswald, E; Dubois, D; Morlais, I

An epidemiologically successful Escherichia coli sequence type modulates Plasmodium falciparum infection in the mosquito midgut Article de journal

Infect Genet Evol, 43 , p. 22-30, 2016, (Sep;43:22-30. doi: 10.1016/j.meegid.2016.05.002. Epub 2016 May 3.).

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2015

Blanchard, N; Dunay, I R; Schluter, D

Persistence of Toxoplasma gondii in the central nervous system: a fine tuned balance between the parasite, the brain and the immune system Article de journal

Parasite Immunol, 2015, (Jan 9. doi: 10.1111/pim.12173.).

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Chauvin, P; Menard, S; Iriart, X; Nsango, S E; Tchioffo, M T; Abate, L; Awono-Ambene, P H; Morlais, I; Berry, A

Prevalence of Plasmodium falciparum parasites resistant to sulfadoxine/pyrimethamine in pregnant women in Yaounde, Cameroon: emergence of highly resistant pfdhfr/pfdhps alleles Article de journal

J Antimicrob Chemother, 70 (9), p. 2566-71, 2015, (Sep;70(9):2566-71. doi: 10.1093/jac/dkv160. Epub 2015 Jun 16.).

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Joulia, R; Gaudenzio, N; Rodrigues, M; Lopez, J; Blanchard, N; Valitutti, S; Espinosa, E

Mast cells form antibody-dependent degranulatory synapse for dedicated secretion and defence Article de journal

Nat Commun, 6 , p. 6174, 2015, (Jan 28;6:6174. doi: 10.1038/ncomms7174.).

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Lopez, J; Bittame, A; Massera, C; Vasseur, V; Effantin, G; Valat, A; Buaillon, C; Allart, S; Fox, B A; Rommereim, L M; Bzik, D J; Schoehn, G; Weissenhorn, W; Dubremetz, J F; Gagnon, J; Mercier, C; Cesbron-Delauw, M F; Blanchard, N

Intravacuolar Membranes Regulate CD8 T Cell Recognition of Membrane-Bound Toxoplasma gondii Protective Antigen Article de journal

Cell Rep, 2015, (Nov 23. pii: S2211-1247(15)01288-7. doi: 10.1016/j.celrep.2015.11.001.).

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Menard, S; Ben Haddou, T; Ramadani, A P; Ariey, F; Iriart, X; Beghain, J; Bouchier, C; Witkowski, B; Berry, A; Mercereau-Puijalon, O; Benoit-Vical, F

Induction of Multidrug Tolerance in Plasmodium falciparum by Extended Artemisinin Pressure Article de journal

Emerg Infect Dis, 21 (10), p. 1733-41, 2015, (Oct;21(10):1733-41. doi: 10.3201/eid2110.150682.).

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2013

Ariey, F; Witkowski, B; Amaratunga, C; Beghain, J; Langlois, A C; Khim, N; Kim, S; Duru, V; Bouchier, C; Ma, L; Lim, P; Leang, R; Duong, S; Sreng, S; Suon, S; Chuor, C M; Bout, D M; Menard, S; Rogers, W O; Genton, B; Fandeur, T; Miotto, O; Ringwald, P; Le Bras, J; Berry, A; Barale, J C; Fairhurst, R M; Benoit-Vical, F; Mercereau-Puijalon, O; Menard, D

A molecular marker of artemisinin-resistant Plasmodium falciparum malaria Article de journal

Nature, 2013, (Dec 18. doi: 10.1038/nature12876.).

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Feliu, V; Vasseur, V; Grover, H S; Chu, H H; Brown, M J; Wang, J; Boyle, J P; Robey, E A; Shastri, N; Blanchard, N

Location of the CD8 T Cell Epitope within the Antigenic Precursor Determines Immunogenicity and Protection against the Toxoplasma gondii Parasite Article de journal

PLoS pathogens, 9 (6), p. e1003449, 2013, (Jun;9(6):e1003449. doi: 10.1371/journal.ppat.1003449. Epub 2013 Jun 20.).

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Witkowski, B; Khim, N; Chim, P; Kim, S; Ke, S; Kloeung, N; Chy, S; Duong, S; Leang, R; Ringwald, P; Dondorp, A M; Tripura, R; Benoit-Vical, F; Berry, A; Gorgette, O; Ariey, F; Barale, J C; Mercereau-Puijalon, O; Menard, D

Reduced artemisinin susceptibility of Plasmodium falciparum ring stages in western Cambodia Article de journal

Antimicrob Agents Chemother, 57 (2), p. 914-23, 2013, (Feb;57(2):914-23. doi: 10.1128/AAC.01868-12. Epub 2012 Dec 3.).

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2012

Menard, S; Morlais, I; Tahar, R; Sayang, C; Mayengue, P I; Iriart, X; Benoit-Vical, F; Lemen, B; Magnaval, J F; Awono-Ambene, P; Basco, L K; Berry, A

Molecular monitoring of plasmodium falciparum drug susceptibility at the time of the introduction of artemisinin-based combination therapy in Yaounde, Cameroon: implications for the future Article de journal

Malaria journal, 11 , p. 113, 2012, (Apr 12;11:113.).

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2011

Cebrian, I; Visentin, G; Blanchard, N; Jouve, M; Bobard, A; Moita, C; Enninga, J; Moita, L F; Amigorena, S; Savina, A

Sec22b regulates phagosomal maturation and antigen crosspresentation by dendritic cells Article de journal

Cell, 147 (6), p. 1355-68, 2011, (Dec 9;147(6):1355-68.).

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2008

Blanchard, N; Gonzalez, F; Schaeffer, M; Joncker, N T; Cheng, T; Shastri, A J; Robey, E A; Shastri, N

Immunodominant, protective response to the parasite Toxoplasma gondii requires antigen processing in the endoplasmic reticulum Article de journal

Nat Immunol, 9 (8), p. 937-44, 2008, (NLM In-Process Journal Article Research Support, N.I.H., Extramural Research Support, Non-U.S. Gov't DEP - 20080629).

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Collaborations

Locales

F. Masson (Equipe Liblau/Saoudi), CPTP
A. Saoudi, CPTP
E. Suberbielle, Equipe D. Dunia, CPTP

Nationales

F. Benoit-Vical, LCC CNRS UPR 8241, Toulouse
S. Marion, CIIL, Institut Pasteur Lille
I. Morlais & J.-J. Lupez Rubio, MIVEGEC IRD UMR 5290, Montpellier
J.-M. Saliou, Plateforme Protéomique P3M, CIIL, Institut Pasteur, Lille
O. Silvie, CIMI-UPMC INSERM U1135, Paris

Internationales

P. Awono-Ambene, Yaoundé, Cameroon
I. Cebrian & L. Mayorga, IHEM-CONICET, Université de Cuyo, Mendoza, Argentine
D. Ménard & B. Witkowsky, Institut Pasteur, Cambodge
E. Robey, University of California, Berkeley, USA

Alumni

Alliance-Laure Otam (étudiante M2, 2019).
Emilie Guemas (étudiante M2, 2019).
Anna Salvioni (Doctorante 2016-2019), maintenant post-doc dans le laboratoire de M Ayyoub, CRCT, Toulouse.
Jérémy Aboagye (étudiant M2, 2019).
Erine Prévost
(étudiante M2, 2019).
Amel Aida (étudiante M1, 2019).
Sébastien Margueres (étudiant L3, 2019)
Naïs Rolland Clavel (étudiante L3, 2019)
Thomas Peyret (étudiant L3, 2019)
Nian-Zhang Zhang (Chercheur invité en provenance du Lanzhou Veterinary Research Institute, Chine, 2017-2019)
Vincent Cantaloube-Ferrieu (étudiant M1, 2018)
Thomas Galaup (étudiant M1, 2018)
Alexis Audibert (étudiant L3, 2018)
Julien Santi-Rocca (post-doc 2015-2017), maintenant auto-entrepreneur
Myriam Wlodarczyk (post-doc 2012-2017), maintenant enseignante de biologie, Marmande
Marion Draheim (PhD Student, 2014-2016), maintenant Post-doc dans le laboratoire du Pr Ferrandon, Institut de Recherche Franco-Chinois Hoffmann, Guangzhou, Chine
Camille Motbal (étudiante M1, 2016)
Guillaume Jacob (étudiant BTS, 2016)
Virginie Vasseur (Engineer, 2010-2016), maintenant ingénieure, Inserm U1100 – Université de Tours
Marine Le Bouar, MD (Etudiante M2, 2015-2016)
Francesca de Giorgi (Unipharma Graduate Program / Etudiante Erasmus, 2016)
Célia Rollin (Etudiante M2 2015-2016)
Célia Buaillon (Doctorante 2012-2016)
Jodie Lopez (Doctorante 2012-2015), maintenant post-doc dans le laboratoire de P. Charneau, Institut Pasteur Paris
Nestor Guerrero (post-doc, 2013-2015)
Giulia Fornabaio (European Unipharma Graduate Program student, 2015)
Noémie Gaudré, MD (Etudiante en M2, 2013-2014)
Valeria Bellini (European Unipharma Graduate Program student, 2012-2013),maintenant post-doc dans le laboratoire d’A. Hakimi, Genoble.
Virginie Feliu (Engineer), maintenant ingénieure au CRCT, Toulouse
Mathilde François, MD (Etudiante en M2, 2012-2013)
Rose-Anne Lavergne, MD (Interne 2011-2013)
Albano Lima-Perez (Etudiant en M2, 2012-2013)
Sophie Blanié (post-doc, 2010-2012)
Benjamin Berteloite (Etudiante en M1, 2011)
Coraline Chéneau (Etudiante en M1, 2010)

 

 

Institut national de la santé et de la recherche médicale

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Centre national de la recherche scientifique

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Université de Toulouse

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Agence nationale de la recherche

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Région Occitanie

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Fondation ARSEP pour la recherche sur la sclérose en plaques

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Frontière humaine

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Aninfimip

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Para Frap

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Fondation Bettencourt Schueller

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